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GUÍA FACILITADORA PARA LA VALIDACIÓN SECUNDARIA CON PRUEBAS DE SUSTRATO DEFINIDO NORMA INTE-ISO/IEC 17025 Y POLITICAS ECA

Apr 29, 2022

1. OBJETO Y CAMPO DE APLICACIÓN

Esta guía de validación secundaria tiene como fin facilitar a los laboratorios que están en el proceso de acreditación de ensayos que utilizan Tecnología de Sustrato Definido de IDEXX Laboratorios contra la norma INTE-ISO/IEC 17025:2017.


Se ha desarrollado con el objetivo de promover la confianza en la operación de los laboratorios que utilicen pruebas de Tecnología de Sustrato Definido de IDEXX Laboratorios.


El resultado del uso de la guía es complementaria y no excluyente de otros cálculos que realice el laboratorio en el proceso de acreditación.


Contiene requisitos que permiten demostrar con evidencias objetivas que los ensayos dan resultados competentes y válidos.

2. TECNOLOGÍA DE SUSTRATO DEFINIDO

La tecnología de sustrato definido (TSD) es la base para las pruebas de coliformes totales, E. coli, Pseudomonas aeruginosa, Legionella pneumophila y Enterococos.


Los indicadores de nutrientes específicos de la enzima producen resultados definitivos y fáciles de leer. Las pruebas TSD pueden producir resultados de presencia/ausencia o cuantitativos. Son sensibles a 1 organismo en 100 mL, las pruebas no requieren preparación de medios, ni filtrado, ni confirmaciones adicional y su procesamiento se realiza en menos de 1 minuto.


Sus ventajas con respecto a los métodos tradicionales de filtración por membrana y tubos múltiples han permitido su aceptación reglamentaria en más de 40 países y convertirse en la nueva norma ISO 9308-2:2012.


Desde el 2013, más de 2.000 millones de personas de todo el mundo se han visto beneficiadas usando diariamente las pruebas Colilert.

3. MATERIALES Y EQUIPOS

Para realizar la validación secundaria se requiere contar con:


EQUIPOS:

  • Refrigerador.
  • Autoclave.
  • Incubadora a 35 °C.
  • Cámara UV.
  • Selladora Quanti-tray.
  • Cabina de flujo laminar (recomendado) o mechero bunsen.


MATERIALES:

  • Reactivo TSD IDEXX (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert).
  • Frascos IDEXX 120 mL con tiosulfato de sodio.
  • Frascos IDEXX 290 mL con tiosulfato de sodio.
  • Bandejas Quanti-Tray 2000.
  • Tubos de ensayos estériles de 15 mL.
  • Asa redonda de 10 μL o hisopo estéril.
  • Control de calidad IDEXX-QC.
  • Cepas ATCC (entre segundo y cuarto pasaje).
  • Alcohol al 70%.
  • Agua destilada y desionizada estéril.

4. MUESTRA PARA LA VALIDACIÓN

La muestra para la validación puede tener diferentes características dependiendo del objetivo del laboratorio.


Las muestras recolectas debe alcanzar para realizar entre 10 a 15 réplicas por analista. Lo ideal es contar con 15 muestras para seleccionar los 10 mejores resultados.


MUESTRA DE AGUA POTABLE


Antes de tomar la muestra se debe verificar sin la muestra esta clorada para garantizar que es potable, sin embargo la muestra debe estar declorada para realizar la validación, por lo tanto, para la toma de muestra utilice un recipiente con 0,2 mL de solución de tiosulfato de sodio al 3% (p/v) por cada 100 mL de muestra. Se recomienda el uso de frascos IDEXX 290 mL.


MUESTRA DE AGUA SUPERFICIAL, RESIDUAL, SUBTERRÁNEA, MARINA, PISCINA


Para trabajar con este tipo de matrices, debe realizarse una caracterización para determinar la concentración microbiana de la cual se parte para comenzar el ensayo. Es decir, deben ser sembradas en diluciones seriadas hasta determinar un rango apto para trabajo. Se recomienda el uso de frascos IDEXX de 290 mL.


TRANSPORTE Y ALMACENAMIENTO


La temperatura de transporte de la muestra debe estar en 2 a 8 ° C. Es preferible realizar los análisis en un periodo de 8 horas desde que se tomó la muestra. Si el análisis no se realiza el mismo día de toma de muestra, el tiempo de almacenamiento no debe exceder las 30 horas desde su toma para agua potable para las otros tipos de matrices de agua no debe exceder las 24 horas.


NOTA: Independiente del tipo de muestra, realice una pre-caracterización sembrándola de forma directa y realizando las diluciones que considere necesarias.

5. ESTANDARIZACIÓN DE LAS CEPAS

Las cepas para la validación secundaria deben ser ATCC (entre segundo y cuarto pasaje). Realice la preparación de la cepa control e incube a la temperatura y tiempo establecido en el inserto de preparación de la misma.


Una vez desarrollada la cepa control, sembrar esta en los medios de cultivos selectivos y diferenciales que la permitan diferenciar y realice pruebas bioquímicas que permitan identificarla preliminarmente.

Las cepas control de reserva se de conservan en tubos de1.8 mL y se mantienen en un medio criopreservante (disolución estéril en partes iguales de caldo nutritivo y glicerol anhidro) a una temperatura entre -15 °C y -25 °C .


Para preparar las cepas control de trabajo, prepare tubos de ATS (Agar Tripticasa Soya) para bacterias, ASD (Agar Sabouraud Dextrosa) para hongos y levaduras, inclinados en tubos de 16 cm (4 tubos por cepa control de reserva o en 4 placas Petri con los medios de cultivo indicados). Las cepas control de trabajo se mantienen a una temperatura de refrigeración (entre 2 °C y 8 °C).


PREPARACIÓN CEPA DE TRABAJO


Saque un tubo 1.8 mL de cada cepa de reserva y déjelo que adquiera temperatura ambiente. Mezcle bien el contenido.


Con una asa redonda de 10 μL o un hisopo estéril, raye cada cepa abundantemente sobre el slant (parte inclinada) del ATS en el tubo o sobre la superficie de la placa Petri. Incube los tubos y/o placas de ATS o APD entre 35 °C a 37 °C durante 24 a 48 horas, para obtener una concentración estimada de 1x108 bacterias/mL, (100 millones de bacterias). El procedimiento debe realizarse para cualquier cepa que se requiera en la validación secundaria.


NOTA: Los procedimientos indicados, deben realizarse bajo las normas de bioseguridad de los laboratorios, teniendo en cuenta las recomendaciones de asepsia para evitar contaminación cruzada con otros microorganismos.

6. PREPARACIÓN DEL INOCULO

Con la cepa de trabajo reconstituida, se debe hacer una suspensión de concentración de 100 millones de bacteria/mL aproximadamente, la siguiente preparación del inoculo es para Colilert.


  1. En un tubo estéril tomar 20 mL de caldo nutritivo, se agrega una colonia de las cepas de E. coli, C. freundii (o cualquier otra cepa de coliformes diferente de E. coli) y P. aeruginosa, las cuales son tomadas con el asa bacteriológica redonda, se mezcla muy bien (con vortex o manualmente).
  2. Incubar a 35° C ± 0.5° C durante 18 a 20 horas, pasado este tiempo las bacterias se encuentran en fase logarítmica. Esta fase se caracteriza por: 1) Una vez iniciado el desarrollo, se manifiesta por la ascendente inflexión de la curva, llamada fase de crecimiento acelerado. 2) Durante esta fase se alcanza el valor más alto en el número de generaciones por hora. 3) Además, el recuento de células viables es idéntico al de las células totales al tratarse de una población joven, en que el número de bacterias muertas es mínimo.
  3. En cabo de pocas horas (o días) del inicio de la fase logarítmica, los microorganismos encuentran dificultades para continuar la multiplicación debido a que los nutrientes se agotan, se da un cambio de pH, etc. y se da comienzo a la fase estacionaria.
  4. Teniendo las cepas en fase logarítmica se debe realizar diluciones seriadas en escala de 10, en 8 tubos que contengan 9 mL de agua destilada y desionizada estéril, debidamente marcados.

NOTA: Las cepas ATCC recomendadas son E. coli ATTC : 25922, Citrobacter freundii: ATCC 8090, Peudomona aeroginosa: ATTC 27853, S

7. CONTROL DE CALIDAD

Antes de iniciar la validación secundaria el laboratorio de asegurar el control de calidad.


ESTERILIDAD DEL ÁREA DE TRABAJO


Realizar el procesamiento de las muestras lo ideal es realizarlo en una cabina de flujo laminar para evitar contaminación cruzada o contar con un mechero bunsen. El área de trabajo debe ser desinfectada con Alcohol al 70% antes y después del procesamiento de las muestras.


El material de trabajo como frascos, reactivo TSD (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert), bandejas de Quanti-tray 2000, deben estar estériles.


En la cabina de flujo laminar (o en el sitio de siembra) exponer una caja de petri servida con medio de cultivo (Plate count o Agar Nutritivo) estéril sin muestra durante media hora y sin tapa, para tener un control del ambiente, luego incubar a 35° C ± 0.5 °C por 24 ± 1 horas para verificar el crecimiento de microorganismos contaminantes.


CONTROL INTERNO


Utilice cuando ingrese se un lote nuevo de reactivo TSD (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert) o haga controles diarios (controles positivos y negativos) con el procesamiento de las muestras. Se recomienda el uso de los controles de calidad IDEXX-QC, son rastreables ATCC lo que elimina la multiplicidad de pases. Facilita cumplir con exactitud con los requisitos del prospecto de IDEXX. Los materiales IDEXX-QC están certificados ISO 17034:2016.

ITEM NOMBRE
98-29000-00 IDEXX-QC Coliform & E. coli (3 - E. coli, 3 - K. pneumoniae, 3 - P. aeruginosa)
98-29001-00 IDEXX-QC Fecal Coliform (3 - E. coli, 3 - P. aeruginosa)
98-29002-00 IDEXX-QC Enterococci (3 - E. faecalis, 3 - S. marcescens, 3 - A. viridans)
98-29004-00 IDEXX-QC Pseudomonas aeruginosa (3 - P. aeruginosa, 3 - E. coli, 3 - P. fluorescens)

8. EJECUCIÓN DEL ENSAYO DE VALIDACIÓN

Las muestras recolectas debe alcanzar para realizar entre 10 a 15 réplicas por analista. Lo ideal es contar con 15 muestras para seleccionar los 10 mejores resultados.


En tres frascos IDEXX 120 mL agregue 99 mL de agua estéril, luego agregue un 1 mL de cada una de las tres últimas diluciones 10-6, 10-7 y 10-8 que son de concentración baja y de fácil manejo que permite el conteo de las colonias.


Posterior agregue el reactivo TSD (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert), conforme al método de validación, posteriormente coloque los 100 mL con el reactivo en bandejas quanti-tray.

Según estas diluciones las concentraciones teóricas esperadas para cada cepa son:

Para realizar los cálculos estadísticos se toman mínimo 10 datos para cada una de las cepas en las 3 diferentes diluciones (10-6, 10-7 y 10-8). Los datos deben ser procesados como Log 10 para normalizarlos.

Utilice la tabla de NMP o el software MNP Generator de IDEXX para la lectura de resultados.

9. INFORME DE CÁLCULOS ESTADÍSTICOS

Los resultados obtenidos de los ensayos de validación secundaria, serán procesados por personal de DIXXXLAB para generar el informe de cálculos estadísticos que incluye:

Número Nombre
Promedio Es la suma de todos los valores numéricos dividida entre el número de replicas.
Varianza Es la medida de dispersión que representa la variabilidad de una serie de datos respecto a su media.
Desviación Estándar Es la medida de dispersión más común, que indica qué tan dispersos están los datos con respecto a la media.
Intervalo de confianza 95% Es el intervalo de confianza que describe la variabilidad entre la medida obtenida y la medida real con un 95% de confianza.
Coeficiente de Variación El coeficiente de variación, que nos indica de la dispersión relativa de un conjunto de datos.
RSD La desviación estándar relativa se calcula dividiendo la desviación estándar por el promedio de los valores.
RSDr La desviación estándar de la reproducibilidad relativa es la desviación de un conjunto de números diseminados alrededor de la media y se calcula como la relación entre la desviación estándar relativa y la media de un conjunto de números.
RSDrc La desviación estándar agrupada es un método para estimar una sola desviación estándar que represente a todas las muestras.
Repetibilidad % Grado de concordancia entre los resultados de sucesivas mediciones del mismo mesurando realizadas en las mismas condiciones de medición.
Límite de Repetibilidad Es la máxima diferencia, en valor absoluto, que puede tolerarse entre duplicados de análisis, obtenidos bajo condiciones de repetibilidad con un 95% de confianza.
Incertidumbre expandida (UM) Es una cantidad que define un intervalo alrededor del resultado de una medición, y que se espera abarque una fracción grande de la distribución de valores que se podrían atribuir razonablemente al mensurando.
Reproducibilidad % Grado de concordancia entre los resultados de mediciones del mismo mesurando realizadas en diferentes condiciones de medición.
Límite de Reproducibilidad El valor inferior o igual al valor que, obtenidos bajo condiciones de repetibilidad con un 95% de confianza, representa la diferencia absoluta entre dos resultados en condiciones de reproducibilidad.

10. INFORMACIÓN ADICIONAL

Los resultados obtenidos de los ensayos de validación secundaria, serán procesados por personal de DIXXXLAB para generar el informe de cálculos estadísticos que incluye:


ASEGURAMIENTO DE CALIDAD


Los reactivos TSD (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert) cumple con la norma ISO 11133:2004 que se refiere a los requisitos que se aplican en la preparación, producción, almacenamiento y análisis funcionales de los métodos de cultivo utilizados para el análisis del agua. Esto significa que tienen la ventaja de un método listo para su uso, lo que reduce los procedimientos de validación del control de calidad y permite ahorrar un tiempo precioso y unos recursos valiosos en los laboratorios de agua, fangos y medio ambiente.


SISTEMA QUANTI-TRAY PLUS


El sistema Quanti-Tray está basado en el mismo modelo estadístico que la dilución en serie tradicional de 15 tubos. El sistema no requiere el uso de tubos de ensayo, tubos Durham ni diluciones. Distribuye automáticamente la muestra en 97 pocillos de dos tamaños diferentes, produciendo un rango de recuento de 1-2419 NMP con un límite de confianza del 95%, facilitando el cumpliendo del punto 7.8.6 Información sobre declaraciones de conformidad de la norma ISO 17025:2017.


El generador de NMP de IDEXX, un software gratuito de Windows, hace mucho más fácil el cálculo y registro de los resultados.


ENSAYOS DE APTITUD


Con los reactivos TSD (Colilert, Colilert-18, Pseudalert, Entrolert, Legiolert) se facilita evaluar la competencia del personal del laboratorio y por su tecnología reduce los errores y permite confiar plenamente en la fiabilidad de los resultados de los ensayos.


La empresa NSI Lab Solutions (https://www.nsilabsolutions.com) tiene diseñados rondas de ensayos de aptitud compatibles con todos los métodos de recuento incluyendo IDEXX Colilert/Quanti-Tray para agua para beber y agua residual. La empresa cuenta con acreditación ISO/IEC 17043:2010.


EXACTITUD Y CONFIANZA COLILERT / COLILERT-18


Los análisis Colilert-18 reducen significativamente los niveles de incertidumbre y brindan a los operadores resultados que son exactos y objetivos, por lo que no requieren posteriores pasos de confirmación.

Conforme al reporte “Validación del método Colilert®-18/Quanti-Tray® para el recuento de E. coli y de bacterias coliformes en muestras de agua de IDEXX del 2008” el cual realizo un cálculo de incertidumbre conforme a la norma ISO 13843 - Calidad del agua. Requisitos para el establecimiento de las características de funcionamiento de los métodos microbiológicos cuantitativos.


Se valoró la repetibilidad y la reproducibilidad del recuento utilizando desviaciones estándar relativas (RDS) en 100 muestras en triplicado.


Los resultados RDS calculadas para los NMP del sistema Colilert-18/Quanti-Tray inoculado con un coliforme típico (Klebsiella pneumoniae ATCC 33186) y E. coli (ATCC 25922) fueron:


Klebsiella pneumoniae            Repetibilidad = 0,022       Reproducibilidad = 0,020

Escherichia coli                            Repetibilidad = 0,000       Reproducibilidad = 0,007


Los valores para el coliforme típico son del orden del valor de referencia < 0,02 (es decir, una desviación máxima del 2 %), mientras que los valores para E. coli están muy por debajo del valor de referencia, por lo tanto con el método Colilert-18/Quanti-Tray se puede lograr un recuento del NMP fiable para Klebsiella pneumoniae y E. coli.


El desempeño analítico del personal, que es la mayor fuente de incertidumbre, estuvo conforme con la norma ISO 13843, lo cual facilita el cumpliendo del punto 7.6 Evaluación de la incertidumbre de medición de la norma ISO 17025:2017 y el punto 7.2.1.5 a, política ECA-MC-C18 Criterios para evaluación y acreditación de laboratorios bajo la norma INTE-ISO/IEC 17025:2017 en la selección, verificación y validación de métodos.


VALIDACIONES COLILERT / COLILERT-18


ISO 9308-2:2012, que se basa en Colilert-18/Quanti-Tray, fue la primera norma ISO que usa la nueva definición ISO de coliformes/E. coli (expresión de B-galactosidasa y B-glucuronidasa). También es la primera norma ISO que ha sido validada mediante las directrices ISO/TR 13843 sobre validación de los métodos microbiológicos.


Standard Methods for Examination of Water and Wastewater 9223 - Prueba de coliformes con sustrato enzimático para detectar simultáneamente las enzimas producidas por coliformes totales y Escherichia coli (E. coli) para el análisis de muestras de agua potable, agua de manantial, aguas subterráneas y aguas residuales.


AOAC 991.15 sección 17.3, método para la detección de coliformes totales y E coli en el agua por el método de enumeración Presencia/Ausencia o NMP. “Sistema de reactivos de tecnología de sustrato definido (DST) de sustrato definido (DST) que enumera simultáneamente los coliformes totales y E. coli de forma directa y

por separado a partir de una muestra de prueba de agua”.


U.S. Environmental Protection Agency (EPA) - 40 CFR Part 136 Vol. 68, No. 139, “Directrices por las que se establecen procedimientos de prueba para el análisis de contaminantes; métodos analíticos para contaminantes biológicos en el agua ambiente; norma final”.


European Drinking Water Directive 2015/1787 - Detección de E. coli y coliformes totales en el agua.

FDA/NCIMS/PMO para coliformes totales para aguas de origen de plantas y granjas; reconocido para su uso por laboratorios lácteos certificados para la confirmación negativa y positiva de pruebas de coliformes totales.


Aceptado por la American Public Health (APHA) para coliformes totales y E. coli en el agua.

Para mayor información puede contactar por


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